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基于高效液相色谱与凝胶色谱的糖类分析方法及国家标准解析

更新时间:2026-04-23点击次数:77

一、 液相色谱仪 (HPLC) 分析常见糖类

这是食品、饮料等行业中最常规的糖类检测方法,主要针对果糖、葡萄糖、蔗糖、麦芽糖、乳糖等低分子量糖类。

1. 核心原理

  • 分离机制:使用氨基柱 (NH2柱)。由于糖类分子具有极性,在非极性的流动相(如高比例乙腈)和极性的固定相之间进行分配,极性越大的糖越容易被洗脱。

  • 检测器:使用示差折光检测器 (RID 或 RI)。因为糖类缺乏紫外吸收基团(无发色团),而RID能根据物质折光率的不同进行检测。注意:RID对温度和流动相组成非常敏感,通常需要开机预热数小时,且环境温度需恒定。

2. 关键技术参数 (参考GB 5009.8-2023)

  • 色谱柱:氨基硅烷键合硅胶色谱柱 (4.6 mm × 250 mm, 5 μm)。

  • 流动相:乙腈 : 水 = 75 : 25 (体积比)。

  • 流速:1.0 mL/min (等度洗脱)。

  • 柱温:30℃ - 40℃。

  • 进样量:10-20 μL。

3. 适用标准

针对常见的单糖和双糖,主要有以下国家标准:

标准编号标准名称适用范围与特点状态
GB 5009.8-2023《食品安全国家标准 食品中果糖、葡萄糖、蔗糖、麦芽糖、乳糖的测定》目前最主流、最新国标。适用于食品中5种糖的测定。检出限为0.2 g/100g,定量限为0.5 g/100g。现行/强制
GB/T 22221-2008《食品中果糖、葡萄糖、蔗糖、麦芽糖、乳糖的测定 高效液相色谱法》早期的推荐性国家标准,原理一致,但已被GB 5009.8-2023部分替代或覆盖。被代替
欧盟法规 (EC) No 2870/2000烈性酒分析方法针对酒精饮料中总糖的测定(转化为转化糖表示),明确了氨基柱和RI检测器的配置。国际标准

4. 前处理关键点 (以GB 5009.8为例)

  • 提取:通常用水提取。

  • 除杂:使用乙酸锌和亚铁氰化钾作为沉淀剂,去除蛋白质等干扰物;若脂肪含量高(>10%),需先用石油醚脱脂。

  • 稀释:高糖样品(如蜂蜜)需适当稀释。


二、 凝胶色谱仪 (SEC/GPC) 分析多糖

凝胶色谱(又称体积排阻色谱)不用于测定单糖含量,而是用于分析大分子多糖(如膳食纤维、淀粉、菊粉)的分子量分布

1. 核心原理

  • 分离机制:根据分子在溶液中的流体动力学体积(分子尺寸)进行分离。大分子不能进入凝胶孔洞,先被洗脱出来;小分子进入孔洞,后被洗脱出来。

  • 检测器:通常串联示差折光检测器 (RI) 和多角度激光光散射检测器 (MALLS)。RI测浓度,MALLS测绝对分子量,无需标准品即可计算。

2. 关键技术参数 (参考GB 5009.88-2023)

  • 色谱柱:凝胶过滤/渗透柱(如TSKgel G2500PWXL,或G4000PWxL),有时需要两根串联以达到更好的分离效果。

  • 流动相:纯水,或特定盐溶液(如0.1M NaNO3)抑制静电吸附。

  • 流速:0.5 mL/min(流速需非常稳定)。

  • 柱温:较高温度(如80℃),防止多糖在柱内形成氢键导致拖尾。

3. 适用标准

标准编号标准名称核心应用关键点
GB 5009.88-2023《食品安全国家标准 食品中膳食纤维的测定》测定不可溶、可溶性和总膳食纤维。在测定可溶性膳食纤维时,需通过GPC分离去除小分子糖干扰强制国标
《中国药典》2020年版多糖分子排阻色谱法用于多糖类药物的分子量与分子量分布测定(如右旋糖酐、香菇多糖)。药典标准

三、 总结与选择建议

在实际检测中,可以根据目标分析物来选择方法:

  1. 测“糖" (单糖/双糖)

    • 目标:蜂蜜、饮料、乳制品中的葡萄糖、果糖、蔗糖、乳糖、麦芽糖

    • 方法:高效液相色谱法。

    • 标准GB 5009.8-2023

    • 配置:氨基柱 + 示差折光检测器 (RI) + 乙腈/水流动相。

  2. 测“多糖" (分子量)

    • 目标:功能性食品原料、药材提取物中的多糖分子量大小及分布(如灵芝多糖、枸杞多糖)。

    • 方法:凝胶渗透色谱法。

    • 标准:参照药典或GB 5009.88。

    • 配置:凝胶色谱柱 + RI检测器 + (可选MALLS检测器)。

  3. 特殊基质 (如乳制品中的低聚糖)

    • 针对复杂基质,国际标准如ISO 22184:2021推荐使用高效阴离子交换色谱-脉冲安培检测法 (HPAEC-PAD),该法灵敏度更高,无需衍生,但仪器成本也更高。


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